药用真菌杏鲍菇活性多糖的分离鉴定及其生物学功能的研究

论文目录   摘要 第1-5页 Abstract 第5-14页 第1章 绪论 第14-31页   1.1 真菌活性多糖概括 第14-25页     1.1.1 食用菌中营…

论文目录  
摘要 第1-5页
Abstract 第5-14页
第1章 绪论 第14-31页
  1.1 真菌活性多糖概括 第14-25页
    1.1.1 食用菌中营养成分的研究 第14页
    1.1.2 真菌多糖的研究现状 第14-16页
    1.1.3 真菌多糖的提取 第16-18页
      1.1.3.1 真菌粗多糖的提取 第16-17页
      1.1.3.2 多糖中蛋白质的去除 第17页
      1.1.3.3 多糖中色素的去除 第17-18页
      1.1.3.4 多糖中小分子物质的去除 第18页
    1.1.4 真菌多糖的分离纯化 第18-19页
    1.1.5 真菌多糖的结构解析 第19-21页
      1.1.5.1 分子量测定 第20页
      1.1.5.2 单糖组成测定 第20页
      1.1.5.3 单糖糖环形式测定 第20-21页
      1.1.5.4 单糖残基连接测定 第21页
    1.1.6 多糖的结构与功能的关系 第21-22页
    1.1.7 真菌多糖的生物学功能 第22-25页
      1.1.7.1 免疫调节作用 第22-23页
      1.1.7.2 抗肿瘤作用 第23-24页
      1.1.7.3 降血脂作用 第24-25页
      1.1.7.4 抗氧化作用 第25页
      1.1.7.5 抗炎症作用 第25页
      1.1.7.6 保肝作用 第25页
      1.1.7.7 其他作用 第25页
  1.2 降血脂活性物质的研究进展 第25-27页
    1.2.1 降血脂物质的类型 第26页
    1.2.2 降血脂分子机制的研究进展 第26-27页
  1.3 杏鲍菇目前研究与开发现状 第27-28页
    1.3.1 概述 第27页
    1.3.2 杏鲍菇目前研究现状 第27-28页
  1.4 研究内容、思路和方法 第28-31页
    1.4.1 研究内容 第28页
    1.4.2 研究思路 第28-29页
    1.4.3 研究方法 第29-31页
      1.4.3.1 评估多糖的抗氧化和降血脂的生物学活性 第29-30页
      1.4.3.2 活性多糖的分离纯化和鉴定 第30-31页
第2章 杏鲍菇子实体多糖抗氧化和降血脂功能的研究 第31-47页
  2.1 杏鲍菇子实体多糖体外抗氧化功能的研究 第32-36页
    2.1.1 材料和方法 第32-34页
      2.1.1.1 实验材料 第32页
      2.1.1.2 实验仪器 第32页
      2.1.1.3 杏鲍菇子实体多糖的提取 第32-33页
      2.1.1.4 多糖含量的测定 第33页
      2.1.1.5 杏鲍菇子实体多糖体外抗氧化功能的研究 第33-34页
      2.1.1.6 数据处理 第34页
    2.1.2 实验结果 第34-36页
      2.1.2.1 标准曲线的制作 第34-35页
      2.1.2.2 杏鲍菇子实体多糖的得率和含量检测 第35页
      2.1.2.3 PEPE体外抗氧化功能的检测 第35-36页
    2.1.3 讨论 第36页
  2.2 杏鲍菇子实体多糖体内降血脂功能的研究 第36-47页
    2.2.1 材料和方法 第37-40页
      2.2.1.1 实验材料 第37页
      2.2.1.2 实验试剂 第37页
      2.2.1.3 实验仪器 第37页
      2.2.1.4 多糖溶液的制备 第37-38页
      2.2.1.5 动物实验 第38-39页
      2.2.1.6 血清的制备及相关指标的测定 第39页
      2.2.1.7 肝组织切片的制作 第39-40页
      2.2.1.8 数据处理 第40页
    2.2.2 实验结果 第40-45页
      2.2.2.1 高血脂小鼠模型的建立 第40-41页
      2.2.2.2 PEPE对高血脂小鼠血清TC,TG,HDL-C,LDL-C的影响 第41-43页
      2.2.2.3 PEPE对高血脂小鼠脏器指数的影响 第43-44页
      2.2.2.4 比较不同处理组肝细胞形态的变化 第44-45页
    2.2.3 讨论 第45-47页
第3章 杏鲍菇子实体活性多糖的分离鉴定及结构分析 第47-70页
  3.1 杏鲍菇子实体活性多糖(PEPE)的分离纯化 第48-62页
    3.1.1 材料和方法 第48-53页
      3.1.1.1 实验材料 第48页
      3.1.1.2 实验仪器 第48页
      3.1.1.3 PEPE的全波长扫描 第48页
      3.1.1.4 PEPE的高效液相色谱检测 第48-49页
      3.1.1.5 PEPE的分离纯化 第49-51页
      3.1.1.6 利用细胞模型检测PEPE中的活性成分 第51-52页
      3.1.1.7 MTT检测 第52-53页
    3.1.2 实验结果 第53-61页
      3.1.2.1 PEPE全波长扫描的结果 第53页
      3.1.2.2 PEPE高效液相色谱检测的结果 第53-54页
      3.1.2.3 PEPE抑制巨噬细胞源性泡沫细胞内的脂质积累 第54-56页
      3.1.2.4 PEPE中活性组分的分离纯化及鉴定 第56-60页
      3.1.2.5 利用泡沫细胞模型快速筛选食用菌活性多糖 第60-61页
    3.1.3 讨论 第61-62页
  3.2 杏鲍菇子实体多糖(PEPE-A1,A2)的结构鉴定 第62-70页
    3.2.1 材料和方法 第62-64页
      3.2.1.1 实验材料 第62页
      3.2.1.2 实验仪器 第62页
      3.2.1.3 PEPE-A1,A2的红外光谱测定 第62页
      3.2.1.4 PEPE-A1,A2的分子量测定 第62-63页
      3.2.1.5 气相色谱分析PEPE-A1,A2的单糖组成 第63-64页
      3.2.1.6 NMR测定 第64页
    3.2.2 实验结果 第64-68页
      3.2.2.1 PEPE-A1,A2的红外光谱结果 第64-65页
      3.2.2.2 PEPE-A1,A2的分子量测定结果 第65页
      3.2.2.3 PEPE-A1,A2的单糖组成结果 第65-67页
      3.2.2.4 PEPE-A1,A2可能的结构重复单元 第67-68页
    3.2.3 讨论 第68-70页
第4章 杏鲍菇菌丝体发酵液中的活性多糖的分离鉴定 第70-85页
  4.1 杏鲍菇发酵液中分泌多糖(EP)的分离纯化 第70-79页
    4.1.1 材料和方法 第70-73页
      4.1.1.1 实验材料 第70页
      4.1.1.2 实验仪器 第70-71页
      4.1.1.3 杏鲍菇胞外分泌多糖(EP)的提取 第71页
      4.1.1.4 EP的高效液相色谱检测 第71页
      4.1.1.5 EP的高效液相色谱检测 第71页
      4.1.1.6 使用离子交换柱DEAE-52分离EP 第71-72页
      4.1.1.7 利用细胞模型检测EP中的活性成分 第72页
      4.1.1.8 MTT检测 第72-73页
    4.1.2 实验结果 第73-78页
      4.1.2.1 EP全波长扫描的结果 第73页
      4.1.2.2 EP高效液相色谱检测的结果 第73-74页
      4.1.2.3 EP抑制巨噬细胞源性泡沫细胞内的脂质积累 第74-76页
      4.1.2.4 DEAE-52离子交换柱分离纯化EP的结果 第76-78页
    4.1.3 讨论 第78-79页
  4.2 杏鲍菇菌丝体发酵液中分泌多糖(EP-1)的结构鉴定 第79-85页
    4.2.1 材料和方法 第79-80页
      4.2.1.1 实验材料 第79页
      4.2.1.2 实验仪器 第79页
      4.2.1.3 EP-1的红外光谱测定 第79页
      4.2.1.4 EP-1的分子量测定 第79-80页
      4.2.1.5 气相色谱分析EP-1的单糖组成 第80页
      4.2.1.6 NMR测定 第80页
    4.2.2 实验结果 第80-83页
      4.2.2.1 EP-1的红外光谱结果 第80-81页
      4.2.2.2 EP-1的分子量测定结果 第81页
      4.2.2.3 PEP-1的单糖组成结果 第81-82页
      4.2.2.4 EP-1可能的结构重复单元 第82-83页
    4.2.3 讨论 第83-85页
第5章 杏鲍菇活性多糖抑制脂质积累的机制研究 第85-105页
  5.1 材料和方法 第86-95页
    5.1.1 实验细胞 第86-87页
    5.1.2 实验试剂和材料 第87页
    5.1.3 实验仪器 第87-88页
    5.1.4 细胞培养 第88页
    5.1.5 Real-time qPCR实验方法 第88-91页
      5.1.5.1 细胞总RNA的提取 第88-89页
      5.1.5.2 反转录PCR 第89-90页
      5.1.5.3 实时荧光定量PCR 第90-91页
      5.1.5.4 实时荧光定量PCR数据处理 第91页
    5.1.6 流式检测 第91-92页
    5.1.7 Western blotting 第92-94页
      5.1.7.1 蛋白样品的制备 第92-93页
      5.1.7.2 SDS-PAGE电泳 第93页
      5.1.7.3 转膜 第93-94页
      5.1.7.4 孵育抗体及检测 第94页
    5.1.8 免疫荧光检测蛋白表达量 第94-95页
  5.2 实验结果 第95-102页
    5.2.1 EP对参与脂质吸收和流出过程中重要成员基因表达量的影响 第95-98页
    5.2.2 EP对细胞内CD36蛋白表达的影响 第98-99页
      5.2.2.1 流式细胞仪检测技术分析CD36蛋白表达量的变化 第98页
      5.2.2.2 Western Blotting分析CD36蛋白表达量的变化 第98-99页
    5.2.3 EP对细胞内ABCA1蛋白表达的影响 第99-102页
      5.2.3.1 流式细胞仪检测技术分析ABCA1蛋白表达量的变化 第99-100页
      5.2.3.2 免疫荧光染色检测ABCA1蛋白表达量的变化 第100-102页
  5.3 讨论 第102-105页
第6章 发酵条件优化提高胞外多糖的产量 第105-113页
  6.1 材料和方法 第105-107页
    6.1.1 实验材料 第105页
    6.1.2 实验仪器 第105页
    6.1.3 实验用培养基 第105-106页
    6.1.4 实验方法 第106-107页
      6.1.4.1 培养方法 第106页
      6.1.4.2 培养条件试验 第106页
      6.1.4.3 碳源利用试验 第106页
      6.1.4.4 氮源利用试验 第106页
      6.1.4.5 无机离子利用试验 第106页
      6.1.4.6 正交试验确定最佳培养条件 第106-107页
      6.1.4.7 胞外多糖的提取 第107页
  6.2 实验结果 第107-112页
    6.2.1 培养条件对胞外多糖产量的影响 第107-108页
      6.2.1.1 不同培养时间对胞外多糖产量的影响 第107页
      6.2.1.2 起始培养基pH对胞外多糖产量的影响 第107-108页
    6.2.2 培养基成分对胞外多糖产量的影响 第108-110页
      6.2.2.1 不同碳源对胞外多糖产量的影响 第108-109页
      6.2.2.2 不同氮源对胞外多糖产量的影响 第109-110页
      6.2.2.3 不同无机离子对胞外多糖产量的影响 第110页
    6.2.3 利用正交试验优化液体培养的条件以提高胞外多糖的产量 第110-112页
  6.3 讨论 第112-113页
第7章 结论 第113-115页
参考文献 第115-129页
在读期间发表的学术论文及研究成果 第129-130页
致谢 第130页

………………………………………………………

由于篇幅所限,此处不能完全刊载论文全部内容,如需完整论文内容,请点击下面链接去下载全篇论文的完整文档!

 

为您推荐

发表评论

您的电子邮箱地址不会被公开。

关注微信
微信扫一扫关注我们

微信扫一扫关注我们

返回顶部