人参皂苷协同抑制HEK-293细胞氧化应激损伤及机制研究

论文目录   中文摘要 第1-6页 Abstract 第6-9页 英文缩写词表 第9-15页 第1章 绪论 第15-35页   1.1 人参及人参皂苷的研究概况 第15-…

论文目录  
中文摘要 第1-6页
Abstract 第6-9页
英文缩写词表 第9-15页
第1章 绪论 第15-35页
  1.1 人参及人参皂苷的研究概况 第15-24页
    1.1.1 人参的分类和化学组成 第15-16页
    1.1.2 人参皂苷及其结构与分类 第16-18页
    1.1.3 人参皂苷的代谢 第18-21页
    1.1.4 人参皂苷的提取技术 第21-23页
    1.1.5 人参皂苷的分析技术 第23-24页
  1.2 人参皂苷抑制氧化应激损伤和抗凋亡作用研究进展 第24-28页
    1.2.1 氧化应激的产生及机制 第24-25页
    1.2.2 细胞凋亡的产生及机制 第25-26页
    1.2.3 人参皂苷抑制氧化应激研究进展 第26-27页
    1.2.4 人参皂苷抗凋亡研究进展 第27-28页
  1.3 协同抑制氧化应激研究进展 第28-30页
    1.3.1 人参皂苷协同作用研究进展 第28页
    1.3.2 抗氧化肽协同作用研究进展 第28-29页
    1.3.3 Trolox协同作用研究进展 第29页
    1.3.4 花青素协同作用研究进展 第29-30页
  1.4 本论文研究内容 第30-35页
    1.4.1 研究目的与意义 第30-31页
    1.4.2 研究内容 第31-33页
    1.4.3 技术路线 第33-35页
第2章 人参皂苷的提取及对抗氧化活性的影响 第35-69页
  2.1 材料与设备 第36-38页
  2.2 试验方法 第38-44页
    2.2.1 人参皂苷提取方法 第38-40页
    2.2.2 纯化和检测方法 第40-41页
    2.2.3 化学抗氧化评价方法 第41-42页
    2.2.4 体外细胞抑制氧化应激评价方法 第42-44页
    2.2.5 数据分析 第44页
  2.3 结果与讨论 第44-66页
    2.3.1 PEF提取对人参皂苷得率的影响 第44-51页
    2.3.2 PEF和SCSE提取的人参皂苷的自由基清除能力 第51-54页
    2.3.3 H_2O_2诱导的HEK-293细胞氧化应激模型的建立 第54-55页
    2.3.4 PEF和SCSE提取的人参皂苷对H_2O_2诱导的细胞氧化应激损伤的抑制作用 第55-62页
    2.3.5 PEF和SCSE提取的人参皂苷的细胞抗氧化活性(CAA) 第62-64页
    2.3.6 对比分析PEF和SCSE提取物中7种皂苷单体含量变化 第64-66页
  2.4 本章小结 第66-69页
第3章 筛选具有抑制氧化应激作用的人参皂苷及其协同组合 第69-91页
  3.1 材料与设备 第70页
  3.2 试验方法 第70-72页
    3.2.1 DPPH清除率检测 第70页
    3.2.2 ORAC检测 第70-71页
    3.2.3 人参皂苷单体毒性/增殖试验 第71页
    3.2.4 人参皂苷单体保护试验 第71页
    3.2.5 协同毒性/增殖试验 第71页
    3.2.6 协同保护试验 第71页
    3.2.7 数据分析 第71-72页
  3.3 结果与讨论 第72-88页
    3.3.1 十四种人参皂苷的DPPH清除能力 第72-74页
    3.3.2 十四种人参皂苷的ORAC能力 第74-77页
    3.3.3 十四种人参皂苷对HEK-293细胞的毒性作用 第77-79页
    3.3.4 十四种人参皂苷对HEK-293细胞的保护作用 第79-83页
    3.3.5 F2与多肽、Trolox、C3G联合处理对HEK-293细胞的毒性作用 第83-84页
    3.3.6 F2与WNWAD对H_2O_2诱导的细胞氧化损伤的保护作用 第84-85页
    3.3.7 F2与WLKFI对H_2O_2诱导的细胞氧化损伤的保护作用 第85-86页
    3.3.8 F2与Trolox对H_2O_2诱导的细胞氧化损伤的保护作用 第86-87页
    3.3.9 F2与C3G对H_2O_2诱导的细胞氧化损伤的保护作用 第87-88页
  3.4 本章小结 第88-91页
第4章 人参皂苷F2与C3G协同抑制HEK-293细胞氧化应激机制 第91-111页
  4.1 材料与设备 第92-93页
  4.2 试验方法 第93-97页
    4.2.1 细胞ROS测定 第93页
    4.2.2 细胞MDA水平和抗氧化酶类(CAT、SOD、GSH-Px)活性测定 第93-94页
    4.2.3 Western Blot 第94-96页
    4.2.4 qRT-PCR 第96-97页
    4.2.5 数据分析 第97页
  4.3 结果与讨论 第97-109页
    4.3.1 F2与C3G对细胞内ROS的协同抑制作用 第97-100页
    4.3.2 F2和C3G协同对HEK-293细胞MDA水平的影响 第100-101页
    4.3.3 F2和C3G协同对HEK-293细胞抗氧化酶系的影响 第101-105页
    4.3.4 F2和C3G协同对Nrf2蛋白表达和mRNA表达的影响 第105-107页
    4.3.5 F2和C3G协同对Keap1蛋白表达和m RNA表达的影响 第107-109页
  4.4 本章小结 第109-111页
第5章 人参皂苷F2与C3G协同抑制HEK-293细胞凋亡机制 第111-127页
  5.1 材料与设备 第111-112页
  5.2 试验方法 第112-114页
    5.2.1 细胞乳酸脱氢酶LDH释放率测定 第112页
    5.2.2 线粒体膜电位(MMP)测定 第112-113页
    5.2.3 细胞Caspase-6 和Caspase-9 活性测定 第113页
    5.2.4 Western blot 第113页
    5.2.5 qRT-PCR 第113页
    5.2.6 数据分析 第113-114页
  5.3 结果与讨论 第114-126页
    5.3.1 F2与C3G协同对HEK-293细胞LDH释放的影响 第114-115页
    5.3.2 F2与C3G协同HEK-293细胞线粒体膜电位变化的影响 第115-118页
    5.3.3 F2和C3G协同对Caspase-6 和Caspase-9 活性的影响 第118-120页
    5.3.4 F2和C3G协同对凋亡相关蛋白表达水平的影响 第120-123页
    5.3.5 F2与C3G协同对NF-κB p65蛋白表达和mRNA表达的影响 第123-126页
  5.4 本章小结 第126-127页
第6章 结论 第127-131页
  6.1 全文结论 第127-129页
  6.2 创新性 第129-131页
参考文献 第131-149页
导师简介 第149-151页
作者简介 第151-153页
攻读博士学位期间所取得的科研成果 第153-155页
致谢 第155页

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